Der jüngste Rückgang der Malariafälle in der Elfenbeinküste ist größtenteils auf die Verwendung von langlebigen, insektizidbehandelten Moskitonetzen (LLIN) zurückzuführen. Dieser Fortschritt wird jedoch durch Insektizidresistenz, Verhaltensänderungen bei Anopheles gambiae-Mücken und die verbleibende Malariaübertragung bedroht, was den Bedarf an zusätzlichen Maßnahmen erforderlich macht. Ziel dieser Studie war es daher, die Wirksamkeit der kombinierten Anwendung von LLIN und Bacillus thuringiensis (Bti) zu evaluieren und mit der Wirksamkeit von LLIN allein zu vergleichen.
Die Studie wurde von März 2019 bis Februar 2020 in der Gesundheitsregion Korhogo im Norden der Elfenbeinküste durchgeführt. Es gab zwei Studienarme (LLIN + Bti-Gruppe und LLIN-Gruppe). In der LLIN + Bti-Gruppe wurden die Larvenhabitate von Anopheles-Mücken zusätzlich zu den imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) alle zwei Wochen mit Bti behandelt. Larven und adulte Mücken wurden gesammelt und morphologisch nach Gattung und Art bestimmt. Der gambische Plasmodium-Komplex wurde mittels Polymerase-Kettenreaktion (PCR) nachgewiesen. Die Malaria-Inzidenz in Gambia und der lokalen Bevölkerung wurde ebenfalls erfasst.
Insgesamt war die Larvendichte von Anopheles spp. in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti (Biolumineszenz-Insektizid) im Vergleich zur Gruppe mit nur LLIN geringer (0,61 [95 %-KI 0,41–0,81] Larven/Tauchgang vs. 3,97 [95 %-KI 3,56–4,38] Larven/Tauchgang; relatives Risiko [RR] = 6,50; 95 %-KI 5,81–7,29; p < 0,001). Die Stechgeschwindigkeit von Anopheles gambiae war insgesamt geringer. Die Inzidenz von Stichen durch Streptococcus gambiae betrug 0,59 [95 %-KI 0,43–0,75] Stiche pro Person/Nacht in der Gruppe mit nur LLIN, verglichen mit 2,97 [95 %-KI 2,02–3,93] Stichen pro Person/Nacht in der Gruppe mit nur LLIN (p < 0,001). Anopheles gambiae wird hauptsächlich als Anopheles-Mücke identifiziert. Anopheles gambiae (ss) (95,1 %; n = 293), gefolgt von Anopheles gambiae (4,9 %; n = 15). Der Humanblutindex im Untersuchungsgebiet betrug 80,5 % (n = 389). Die Infektionsrate (EIR) in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bisphosphonaten (Bti) lag bei 1,36 infizierten Stichen pro Person und Jahr (ib/p/a), während die EIR in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) 47,71 ib/p/a betrug. Die Malaria-Inzidenz sank in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen und Bisphosphonaten (LLIN + Bti) signifikant von 291,8 ‰ (n = 765) auf 111,4 ‰ (n = 292) (p < 0,001).
Die Kombination von imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti reduzierte die Malariafälle signifikant. Diese Kombination stellt einen vielversprechenden integrierten Ansatz zur effektiven Bekämpfung von Anopheles-Mücken dar. Gambia ist malariafrei.
Trotz der Fortschritte bei der Malariabekämpfung in den letzten Jahrzehnten stellt Malaria in Subsahara-Afrika weiterhin ein gravierendes Problem dar [1]. Die Weltgesundheitsorganisation (WHO) berichtete kürzlich, dass es im Jahr 2023 weltweit 249 Millionen Malariafälle und schätzungsweise 608.000 malariabedingte Todesfälle gab [2]. Die WHO-Region Afrika verzeichnet 95 % der weltweiten Malariafälle und 96 % der malariabedingten Todesfälle, wobei Schwangere und Kinder unter fünf Jahren am stärksten betroffen sind [2, 3].
Langlebige insektizidbehandelte Moskitonetze (LLIN) und die Innenraumspritzung (IRS) haben maßgeblich zur Reduzierung der Malaria-Belastung in Afrika beigetragen [4]. Der Ausbau dieser Maßnahmen zur Bekämpfung von Malariaüberträgern führte zwischen 2000 und 2015 zu einem Rückgang der Malaria-Inzidenz um 37 % und der Mortalität um 60 % [5]. Seit 2015 haben sich die Trends jedoch alarmierend verlangsamt oder sogar beschleunigt, und die Zahl der Malaria-Todesfälle ist weiterhin inakzeptabel hoch, insbesondere in Subsahara-Afrika [3]. Mehrere Studien haben die Entstehung und Ausbreitung von Resistenzen gegen im öffentlichen Gesundheitswesen eingesetzte Insektizide bei den wichtigsten Malariaüberträgern, den Anopheles-Mücken, als Hindernis für die zukünftige Wirksamkeit von LLIN und IRS identifiziert [6,7,8]. Darüber hinaus tragen veränderte Stechgewohnheiten der Vektoren, insbesondere im Freien und in den frühen Abendstunden, zur verbleibenden Malariaübertragung bei und geben zunehmend Anlass zur Sorge [9,10]. Die begrenzten Möglichkeiten von LLIN und IRS zur Bekämpfung der für die verbleibende Übertragung verantwortlichen Vektoren stellen eine wesentliche Einschränkung der aktuellen Bemühungen zur Malariaeliminierung dar [11]. Darüber hinaus wird das Fortbestehen der Malaria durch klimatische Bedingungen und menschliche Aktivitäten erklärt, die zur Schaffung von Larvenhabitaten beitragen [12].
Die Bekämpfung von Brutstätten (Larven Source Management, LSM) ist ein auf Brutstätten ausgerichteter Ansatz zur Vektorkontrolle, der darauf abzielt, die Anzahl der Brutstätten und der darin enthaltenen Mückenlarven und -puppen zu reduzieren [13]. LSM wird in mehreren Studien als zusätzliche integrierte Strategie zur Malariavektorkontrolle empfohlen [14, 15]. Die Wirksamkeit von LSM bietet einen doppelten Nutzen gegen Stiche von Malariavektoren sowohl in Innenräumen als auch im Freien [4]. Darüber hinaus kann die Vektorkontrolle mit larvizidbasierten LSM-Methoden wie Bacillus thuringiensis israelensis (Bti) das Spektrum der Malariabekämpfungsoptionen erweitern. In der Vergangenheit spielte LSM eine Schlüsselrolle bei der erfolgreichen Malariabekämpfung in den Vereinigten Staaten, Brasilien, Ägypten, Algerien, Libyen, Marokko, Tunesien und Sambia [16, 17, 18]. Obwohl die lokale Schädlingsbekämpfung (LSM) in einigen Ländern, die Malaria ausgerottet haben, eine wichtige Rolle im integrierten Schädlingsmanagement gespielt hat, ist sie in Afrika nicht flächendeckend in die Strategien und Praktiken zur Bekämpfung von Malariaüberträgern integriert und wird nur in einigen Ländern Subsahara-Afrikas in Vektorkontrollprogrammen eingesetzt [14, 15, 16, 17, 18, 19]. Ein Grund dafür ist die weit verbreitete Annahme, dass Brutstätten zu zahlreich und schwer zu finden sind, was die Umsetzung von LSM sehr kostspielig macht [4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 13, 14]. Daher empfiehlt die Weltgesundheitsorganisation (WHO) seit Jahrzehnten, dass die für die Bekämpfung von Malariaüberträgern mobilisierten Ressourcen auf imprägnierte Moskitonetze (LLIN) und die Insektizid-Restbehandlung (IRS) konzentriert werden sollten [20, 21]. Erst 2012 empfahl die WHO die Integration von LSM, insbesondere von Bti-Interventionen, als Ergänzung zu LLIN und IRS in bestimmten Kontexten in Subsahara-Afrika [20]. Seit die WHO diese Empfehlung ausgesprochen hat, wurden mehrere Pilotstudien zur Machbarkeit, Wirksamkeit und zu den Kosten von Biolarviziden in Subsahara-Afrika durchgeführt, die die Wirksamkeit von LSM bei der Reduzierung der Anopheles-Mückendichte und der Malariaübertragungseffizienz in Bezug auf [22, 23] und [24] belegen.
Die Elfenbeinküste zählt zu den 15 Ländern mit der weltweit höchsten Malaria-Belastung [25]. Die Malaria-Prävalenz in der Elfenbeinküste entspricht 3,0 % der globalen Malaria-Belastung, mit einer geschätzten Inzidenz und Fallzahl von 300 bis über 500 pro 1000 Einwohner [25]. Trotz der langen Trockenzeit von November bis Mai breitet sich Malaria in der nördlichen Savannenregion des Landes ganzjährig aus [26]. Die Malariaübertragung in dieser Region ist mit dem Vorkommen einer großen Anzahl asymptomatischer Träger von Plasmodium falciparum verbunden [27]. Der häufigste Malariaüberträger in dieser Region ist Anopheles gambiae (SL). Lokale Sicherheitslage: Anopheles gambiae-Mücken bestehen hauptsächlich aus Anopheles gambiae (SS), die hochresistent gegen Insektizide ist und daher ein hohes Risiko der Restübertragung von Malaria darstellt [26]. Der Einsatz von imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) hat aufgrund der Insektizidresistenz lokaler Vektoren möglicherweise nur eine begrenzte Wirkung auf die Reduzierung der Malariaübertragung und gibt daher weiterhin Anlass zu großer Sorge. Pilotstudien mit Bti oder LLIN haben eine Wirksamkeit bei der Reduzierung der Mückenpopulation im Norden der Elfenbeinküste gezeigt. Bisherige Studien haben jedoch nicht die Wirkung wiederholter Bti-Anwendungen in Kombination mit LLIN auf die Malariaübertragung und -inzidenz in dieser Region untersucht. Ziel dieser Studie war es daher, die Wirkung der kombinierten Anwendung von LLIN und Bti auf die Malariaübertragung zu evaluieren, indem die Gruppe „LLIN + Bti“ mit der Gruppe „LLIN allein“ in vier Dörfern im Norden der Elfenbeinküste verglichen wurde. Es wurde die Hypothese aufgestellt, dass die zusätzliche Anwendung eines Bti-basierten lokalen Schädlingsbekämpfungsprogramms (LSM) auf Basis von LLIN die Mückenpopulation im Vergleich zu LLIN allein weiter reduzieren würde. Dieser integrierte Ansatz, der sowohl unreife Anopheles-Mücken mit Bti als auch adulte Anopheles-Mücken mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) bekämpft, könnte entscheidend zur Reduzierung der Malariaübertragung in Gebieten mit hoher Malaria-Endemizität, wie beispielsweise Dörfern im Norden der Elfenbeinküste, beitragen. Daher können die Ergebnisse dieser Studie dazu beitragen, zu entscheiden, ob die lokale Bekämpfung von Malariaüberträgern (LSM) in nationale Programme zur Bekämpfung von Malariavektoren (NMCPs) in endemischen Ländern Subsahara-Afrikas aufgenommen werden sollte.
Die vorliegende Studie wurde in vier Dörfern des Departements Napieldougou (auch bekannt als Napier) in der Sanitärzone Korhogo im Norden der Elfenbeinküste durchgeführt (Abb. 1). Untersuchte Dörfer: Kakologo (9° 14′ 2″ N, 5° 35′ 22″ E), Kolekakha (9° 17′ 24″ N, 5° 31′ 00″ E.), Lofinekaha (9° 17′ 31″). ) 5° 36′ 24″ N) und Nambatiurkaha (9° 18′ 36″ N, 5° 31′ 22″ E). Die Bevölkerung von Napyeledougou wurde 2021 auf 31.000 Einwohner geschätzt. Die Provinz umfasst 53 Dörfer mit zwei Gesundheitszentren [28]. In Napyeledougou, wo Malaria die häufigste Ursache für Arztbesuche, Krankenhausaufenthalte und Todesfälle ist, werden zur Bekämpfung der Anopheles-Mücken ausschließlich imprägnierte Moskitonetze (LLIN) eingesetzt [29]. Alle vier Dörfer beider Studiengruppen werden vom selben Gesundheitszentrum versorgt, dessen Krankenakten zu Malariafällen in dieser Studie ausgewertet wurden.
Karte der Elfenbeinküste mit dem Untersuchungsgebiet. (Kartenquelle und Software: GADM-Daten und ArcMap 10.6.1. LLIN: langlebiges insektizidbehandeltes Moskitonetz, Bti: Bacillus thuringiensis israelensis)
Die Malaria-Prävalenz in der Zielgruppe des Gesundheitszentrums Napier erreichte 82,0 % (2038 Fälle) (Daten vor Einführung von Bti). In allen vier Dörfern verwenden die Haushalte ausschließlich PermaNet® 2.0-LLIN, das 2017 vom ivorischen Nationalen Malariabekämpfungsprogramm (NMCP) verteilt wurde und eine Abdeckung von über 80 % aufweist [25, 26, 27, 28, 30]. Die Dörfer gehören zur Region Korhogo, die als Beobachtungsposten des Nationalen Militärrats der Elfenbeinküste dient und ganzjährig zugänglich ist. Jedes der vier Dörfer hat mindestens 100 Haushalte und eine annähernd gleiche Einwohnerzahl. Laut Gesundheitsregister (einem Arbeitsdokument des ivorischen Gesundheitsministeriums) werden jährlich mehrere Malariafälle gemeldet. Malaria wird hauptsächlich durch Plasmodium falciparum (P. falciparum) verursacht und durch Plasmodium gambiae auf den Menschen übertragen. In der Region wird das Bakterium auch durch Anopheles- und Anopheles nili-Mücken übertragen [28]. Der lokale Komplex An. gambiae besteht hauptsächlich aus Anopheles-Mücken. gambiae ss weist eine hohe Frequenz von kdr-Mutationen (Frequenzbereich: 90,70–100 %) und eine moderate Frequenz von ace-1-Allelen (Frequenzbereich: 55,56–95 %) auf [29].
Die durchschnittliche jährliche Niederschlagsmenge liegt zwischen 1200 und 1400 mm, die durchschnittliche Jahrestemperatur zwischen 21 und 35 °C, die relative Luftfeuchtigkeit wird auf 58 % geschätzt. Das Untersuchungsgebiet weist ein sudanesisches Klima mit einer sechsmonatigen Trockenzeit (November bis April) und einer sechsmonatigen Regenzeit (Mai bis Oktober) auf. Die Region ist von einigen Auswirkungen des Klimawandels betroffen, wie beispielsweise Vegetationsverlust und einer verlängerten Trockenzeit, die durch das Austrocknen von Gewässern (Niederungen, Reisfelder, Teiche, Pfützen) gekennzeichnet ist, welche als Lebensraum für Anopheles-Mückenlarven dienen können. [26]
Die Studie wurde in der LLIN + Bti-Gruppe (Dörfer Kakologo und Nambatiurkaha) und in der LLIN-Gruppe (Dörfer Kolekaha und Lofinekaha) durchgeführt. Während des Studienzeitraums verwendeten die Menschen in allen Dörfern ausschließlich PermaNet® 2.0 LLIN.
Die Wirksamkeit von imprägnierten Moskitonetzen (LLIN, PermaNet 2.0) in Kombination mit Bti gegen Anopheles-Mücken und die Übertragung von Malaria wurde in einer randomisierten kontrollierten Studie (RCT) mit zwei Studienarmen untersucht: der LLIN + Bti-Gruppe (Behandlungsgruppe) und der LLIN-Gruppe (Kontrollgruppe). Die LLIN + Bti-Ärmel wurden in Kakologo und Nambatiourkaha verwendet, während Kolékaha und Lofinékaha als reine LLIN-Schulterteile konzipiert wurden. In allen vier Dörfern nutzen die Anwohner LLIN PermaNet® 2.0, das sie 2017 vom Nationalen Malariakontrollprogramm der Elfenbeinküste erhalten haben. Da die Dörfer das Netz auf demselben Weg erhalten haben, wird davon ausgegangen, dass die Nutzungsbedingungen für PermaNet® 2.0 in allen Dörfern gleich sind. In der LLIN + Bti-Gruppe wurden die Larvenhabitate der Anopheles-Mücken zusätzlich zu den bereits von der Bevölkerung verwendeten LLIN alle zwei Wochen mit Bti behandelt. Larvenhabitate innerhalb der Dörfer und in einem Radius von 2 km um das jeweilige Dorfzentrum wurden gemäß den Empfehlungen der Weltgesundheitsorganisation und des Nationalen Schädlingsbekämpfungsprogramms der Elfenbeinküste behandelt [31]. Die Gruppe, die ausschließlich mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) versorgt wurde, erhielt hingegen während des Studienzeitraums keine larvizide Bti-Behandlung.
Eine wasserdispergierbare, granulierte Form von Bti (Vectobac WG, 37,4 Gew.-%; Chargennummer 88–916-PG; 3000 Internationale Toxizitätseinheiten IE/mg; Valent BioScience Corp, USA) wurde in einer Dosis von 0,5 mg/l verwendet. Verwenden Sie ein 16-l-Rückensprühgerät und eine Glasfaser-Spritzpistole mit Griff und verstellbarer Düse mit einer Durchflussrate von 52 ml/s (3,1 l/min). Zur Vorbereitung eines Zerstäubers mit 10 l Wasser beträgt die Menge des zu verdünnenden Bti 0,5 mg/l × 10 l = 5 mg. Beispiel: Für eine Fläche mit einem geplanten Wasserdurchfluss von 10 l und die Behandlung einer bestimmten Wassermenge mit einem 10-l-Sprühgerät beträgt die zu verdünnende Menge Bti 0,5 mg/l × 20 l = 10 mg. 10 mg Bti wurden vor Ort mit einer elektronischen Waage abgewogen. Dazu wurde diese Menge Bti mit einem Spatel in einem 10-Liter-Messeimer zu einer Suspension vermischt. Diese Dosis wurde nach Feldversuchen zur Wirksamkeit von Bti gegen verschiedene Larvenstadien von Anopheles spp. und Culex spp. unter natürlichen Bedingungen in einem dem Untersuchungsgebiet ähnlichen, aber dennoch abweichenden Gebiet ausgewählt [32]. Die Aufwandmenge der Larvizidsuspension und die Anwendungsdauer für jeden Brutplatz wurden anhand des geschätzten Wasservolumens am Brutplatz berechnet [33]. Bti wurde mit einem kalibrierten Handsprühgerät ausgebracht. Die Sprühgeräte wurden während einzelner Versuche und in verschiedenen Gebieten kalibriert und getestet, um die korrekte Ausbringungsmenge von Bti sicherzustellen.
Um den optimalen Zeitpunkt für die Behandlung von Larvenbrutstätten zu ermitteln, identifizierte das Team das Sprühfenster. Das Sprühfenster ist der Zeitraum, in dem ein Produkt angewendet wird, um eine optimale Wirkung zu erzielen: In dieser Studie variierte das Sprühfenster je nach Persistenz von Bti zwischen 12 Stunden und 2 Wochen. Offenbar benötigen die Larven am Brutplatz einen Zeitraum von 7:00 bis 18:00 Uhr, um Bti aufzunehmen. So lassen sich Starkregenperioden vermeiden, da bei Regen die Sprüharbeiten unterbrochen und am nächsten Tag bei gutem Wetter fortgesetzt werden müssen. Sprühtermine und -zeiten hängen von den jeweiligen Wetterbedingungen ab. Zur Kalibrierung der Rückenspritzen für die gewünschte Bti-Aufwandmenge wird jeder Techniker in der Sichtprüfung und Einstellung der Sprühdüse sowie im Halten des Drucks geschult. Die Kalibrierung wird durch die Überprüfung der gleichmäßigen Ausbringung der korrekten Bti-Menge pro Flächeneinheit abgeschlossen. Die Larvenhabitate werden alle zwei Wochen behandelt. Die larviziden Maßnahmen werden von vier erfahrenen und gut ausgebildeten Spezialisten durchgeführt. Die Larvenbekämpfungsmaßnahmen und die teilnehmenden Personen werden von erfahrenen Aufsichtspersonen betreut. Die Larvenbekämpfung begann im März 2019 während der Trockenzeit. Eine frühere Studie hatte gezeigt, dass die Trockenzeit aufgrund der Stabilität der Brutstätten und des Rückgangs ihrer Populationsdichte der geeignetste Zeitraum für Larvenbekämpfungsmaßnahmen ist [27]. Die Larvenbekämpfung während der Trockenzeit soll verhindern, dass Mücken während der Regenzeit angelockt werden. Zwei Kilogramm Bti zum Preis von 99,29 US-Dollar ermöglichen es der behandelten Studiengruppe, alle Gebiete abzudecken. In der Gruppe „LLIN + Bti“ dauerte die Larvenbekämpfung ein ganzes Jahr, von März 2019 bis Februar 2020. Insgesamt wurden in dieser Gruppe 22 Larvenbekämpfungsmaßnahmen durchgeführt.
Mögliche Nebenwirkungen (wie Juckreiz, Schwindel oder laufende Nase) wurden durch individuelle Befragungen von Bti-Biolarvizid-Verneblern und Haushaltsbewohnern, die an der LIN + Bti-Gruppe teilnahmen, überwacht.
Eine Haushaltsbefragung wurde in 400 Haushalten (200 Haushalte pro Studiengruppe) durchgeführt, um den Anteil der Bevölkerung mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) zu ermitteln. Für die Befragung wurde ein quantitativer Fragebogen verwendet. Die Prävalenz der LLIN-Nutzung wurde in drei Altersgruppen unterteilt: ab 15 Jahren. Der Fragebogen wurde in der lokalen Sprache Senoufo ausgefüllt und dem Haushaltsvorstand oder einer anderen volljährigen Person über 18 Jahren erklärt.
Die Mindestgröße des befragten Haushalts wurde anhand der von Vaughan und Morrow [34] beschriebenen Formel berechnet.
n ist der Stichprobenumfang, e die Fehlermarge, t der aus dem Konfidenzniveau abgeleitete Sicherheitsfaktor und p der Anteil der Eltern in der Grundgesamtheit mit dem jeweiligen Merkmal. Jedes Element des Bruchs hat einen konstanten Wert, also (t) = 1,96; die Mindesthaushaltsgröße in dieser Situation betrug in der Umfrage 384 Haushalte.
Vor Beginn des aktuellen Experiments wurden verschiedene Habitattypen für Anopheles-Larven in den Gruppen LLIN+Bti und LLIN identifiziert, beprobt, beschrieben, georeferenziert und beschriftet. Die Größe der Nestkolonie wurde mit einem Maßband gemessen. Anschließend wurde die Dichte der Mückenlarven über 12 Monate monatlich an 30 zufällig ausgewählten Brutstätten pro Dorf erfasst, insgesamt also an 60 Brutstätten pro Studiengruppe. Pro Untersuchungsgebiet wurden 12 Larvenproben entnommen, entsprechend 22 Bti-Behandlungen. Die Auswahl von 30 Brutstätten pro Dorf diente dazu, eine ausreichende Anzahl an Larvensammelstellen in den verschiedenen Dörfern und Untersuchungseinheiten zu gewährleisten und Verzerrungen zu minimieren. Die Larven wurden durch Schöpfen mit einem 60-ml-Löffel gesammelt [35]. Da einige Brutkolonien sehr klein und flach sind, musste ein kleinerer Eimer anstelle des Standard-WHO-Eimers (350 ml) verwendet werden. Von Neststätten mit einem Umfang von jeweils 10 m wurden insgesamt 5, 10 bzw. 20 Tauchgänge durchgeführt. Die morphologische Bestimmung der gesammelten Larven (z. B. Anopheles, Culex und Aedes) erfolgte direkt im Freiland [36]. Die Larven wurden anhand ihres Entwicklungsstadiums in zwei Kategorien eingeteilt: frühe Larvenstadien (Stadium 1 und 2) und späte Larvenstadien (Stadium 3 und 4) [37]. Die Larven wurden nach Gattung und Entwicklungsstadium gezählt. Anschließend wurden die Mückenlarven in ihre Brutgebiete zurückgebracht und mit Regenwasser auf das ursprüngliche Volumen aufgefüllt.
Ein Brutplatz wurde als positiv bewertet, wenn mindestens eine Larve oder Puppe einer beliebigen Mückenart vorhanden war. Die Larvendichte wurde ermittelt, indem die Anzahl der Larven derselben Gattung durch die Anzahl der Tauchgänge geteilt wurde.
Jede Studie dauerte zwei aufeinanderfolgende Tage. Alle zwei Monate wurden adulte Stechmücken aus zehn zufällig ausgewählten Haushalten pro Dorf gesammelt. Jedes Forschungsteam führte während der gesamten Studie an drei aufeinanderfolgenden Tagen Stichproben in 20 Haushalten durch. Die Stechmücken wurden mit Standard-Fensterfallen (WT) und Pyrethrum-Sprühfallen (PSC) gefangen [38, 39]. Zunächst wurden alle Häuser jedes Dorfes nummeriert. Anschließend wurden in jedem Dorf vier Häuser zufällig als Sammelstellen für adulte Stechmücken ausgewählt. In jedem dieser Häuser wurden die Stechmücken im Hauptschlafzimmer gesammelt. Die ausgewählten Schlafzimmer hatten Türen und Fenster und waren in der Nacht zuvor bewohnt. Die Schlafzimmer blieben vor Arbeitsbeginn und während der Stechmückensammlung geschlossen, um zu verhindern, dass die Stechmücken aus dem Zimmer flogen. In jedem Fenster jedes Schlafzimmers wurde eine Fensterfalle als Stechmückenfangstelle installiert. Am nächsten Tag wurden die Stechmücken, die aus den Schlafzimmern in den Arbeitsbereich gelangten, zwischen 6:00 und 8:00 Uhr morgens gesammelt. Sammeln Sie die Stechmücken in Ihrem Arbeitsbereich mit einem Mundstück und bewahren Sie sie in einem Einweg-Pappbecher auf, der mit einem Stück Holz abgedeckt ist. Moskitonetz. Unmittelbar nach der Entnahme der WT-Mücken wurden im selben Schlafzimmer ruhende Mücken mithilfe eines Pyrethroid-basierten PSC-Systems gefangen. Dazu wurden weiße Laken auf dem Schlafzimmerboden ausgebreitet, Türen und Fenster geschlossen und Insektizid (Wirkstoffe: 0,25 % Transfluthrin + 0,20 % Permethrin) versprüht. Etwa 10 bis 15 Minuten nach dem Sprühen wurde die Bettdecke aus dem behandelten Schlafzimmer entfernt, die auf den Laken gelandeten Mücken mit einer Pinzette abgesammelt und in einer mit Wasser getränkter Watte gefüllten Petrischale aufbewahrt. Die Anzahl der Personen, die in den ausgewählten Schlafzimmern übernachtet hatten, wurde ebenfalls erfasst. Die gesammelten Mücken wurden umgehend zur weiteren Verarbeitung in ein Labor vor Ort gebracht.
Im Labor wurden alle gesammelten Mücken morphologisch bis zur Gattung und Art bestimmt [36]. Annas Ovarien. gambiae SL wurden mithilfe eines Binokular-Stereomikroskops und eines Tropfens destillierten Wassers auf einem Objektträger untersucht [35]. Der Paritätsstatus wurde anhand der Ovarial- und Tracheenmorphologie ermittelt, um mehrgebärende von nulliparen Frauen zu unterscheiden sowie die Fertilitätsrate und das physiologische Alter zu bestimmen [35].
Der relative Index wird durch Testen der Quelle einer frisch gesammelten Blutmahlzeit auf Plasmodium gambiae mittels Enzymimmunoassay (ELISA) unter Verwendung von Blut von Menschen, Nutztieren (Rindern, Schafen, Ziegen) und Hühnern bestimmt [40]. Der entomologische Befall (EIR) wurde anhand von Anopheles-Schätzungen für SL-Frauen in Gambia berechnet [41]. Zusätzlich wurde die Infektion mit Plasmodium gambiae durch Analyse von Kopf und Brust mehrgebärender Weibchen mittels Circumsporozoiten-Antigen-ELISA (CSP-ELISA) bestimmt [40]. Schließlich wurden die Mitglieder von Anopheles gambiae durch Analyse seiner Beine, Flügel und seines Abdomens mittels Polymerase-Kettenreaktion (PCR) identifiziert [34].
Klinische Daten zu Malaria wurden aus dem Register für klinische Konsultationen des Gesundheitszentrums Napyeledugou gewonnen, das alle vier in dieser Studie eingeschlossenen Dörfer (Kakologo, Kolekaha, Lofinekaha und Nambatiurkaha) umfasst. Die Registerauswertung konzentrierte sich auf die Zeiträume von März 2018 bis Februar 2019 und von März 2019 bis Februar 2020. Die klinischen Daten von März 2018 bis Februar 2019 stellen die Ausgangswerte bzw. die Daten vor der Bti-Intervention dar, während die klinischen Daten von März 2019 bis Februar 2020 die Daten vor der Bti-Intervention repräsentieren. Daten nach der Bti-Intervention: Klinische Informationen, Alter und Wohnort jedes Patienten der Studiengruppen LLIN+Bti und LLIN wurden im Gesundheitsregister erfasst. Für jeden Patienten wurden Informationen wie Herkunftsort, Alter, Diagnose und Pathologie dokumentiert. In den in dieser Studie untersuchten Fällen wurde Malaria durch Schnelltest (RDT) und/oder Malariamikroskopie nach Verabreichung einer Artemisinin-basierten Kombinationstherapie (ACT) durch medizinisches Fachpersonal bestätigt. Die Malariafälle wurden in drei Altersgruppen (d. h. ab 15 Jahren) unterteilt. Die jährliche Malaria-Inzidenz pro 1000 Einwohner wurde geschätzt, indem die Malaria-Prävalenz pro 1000 Einwohner durch die Einwohnerzahl des Dorfes dividiert wurde.
Die in dieser Studie erhobenen Daten wurden doppelt in eine Microsoft Excel-Datenbank eingegeben und anschließend zur statistischen Analyse in die Open-Source-Software R [42] Version 3.6.3 importiert. Zur Erstellung der Diagramme wurde das Paket ggplot2 verwendet. Generalisierte lineare Modelle mit Poisson-Regression dienten dem Vergleich der Larvendichte und der mittleren Anzahl von Mückenstichen pro Person und Nacht zwischen den Studiengruppen. Relevanzverhältnisse (RR) wurden verwendet, um die mittleren Larvendichten und Stichraten von Culex- und Anopheles-Mücken zu vergleichen. Gambia SL wurde zwischen die beiden Studiengruppen platziert, wobei die LLIN + Bti-Gruppe als Basislinie diente. Effektstärken wurden als Odds Ratios mit 95%-Konfidenzintervallen (95%-KI) angegeben. Das Verhältnis (RR) des Poisson-Tests wurde verwendet, um die Anteile und Inzidenzraten von Malaria vor und nach der Bti-Intervention in jeder Studiengruppe zu vergleichen. Das Signifikanzniveau betrug 5 %.
Das Studienprotokoll wurde von der Nationalen Ethikkommission des Gesundheitsministeriums der Elfenbeinküste (N/Ref: 001//MSHP/CNESVS-kp) sowie vom regionalen Gesundheitsamt und der Verwaltung von Korhogo genehmigt. Vor der Entnahme von Mückenlarven und -adulten wurde von den Haushaltsbefragungsteilnehmern, Eigentümern und/oder Bewohnern eine schriftliche Einverständniserklärung eingeholt. Familien- und klinische Daten werden anonymisiert und vertraulich behandelt und sind nur den beauftragten Forschern zugänglich.
Insgesamt wurden 1198 Nistplätze untersucht. Von diesen Nistplätzen im Untersuchungsgebiet gehörten 52,5 % (n = 629) zur Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti-Insektiziden (Bti) und 47,5 % (n = 569) zur Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) (RR = 1,10 [95 %-KI 0,98–1,24], p = 0,088). Die lokalen Larvenhabitate wurden in 12 Typen unterteilt. Den größten Anteil stellten Reisfelder (24,5 %, n = 294) dar, gefolgt von Regenwasserkanälen (21,0 %, n = 252) und Töpferwaren (8,3 %). %, n = 99), Flussufer (8,2 %, n = 100), Pfütze (7,2 %, n = 86), Pfütze (7,0 %, n = 84), Dorfwasserpumpe (6,8 %, n = 81), Hufabdrücke (4,8 %, n = 58), Sümpfe (4,0 %, n = 48), Krüge (5,2 %, n = 62), Teiche (1,9 %, n = 23) und Brunnen (0,9 %, n = 11). ).
Insgesamt wurden im Untersuchungsgebiet 47.274 Mückenlarven gesammelt. Der Anteil in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti betrug 14,4 % (n = 6.796), verglichen mit 85,6 % (n = 40.478) in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN allein) (RR = 5,96 [95 %-KI 5,80–6,11], p ≤ 0,001). Die Larven gehörten drei Mückengattungen an, wobei Anopheles mit 48,7 % (n = 23.041) die häufigste Art war, gefolgt von Culex spp. (35,0 %, n = 16.562) und Aedes spp. (4,9 %, n = 2.340). Puppen machten 11,3 % der Mückenlarven aus (n = 5.344).
Durchschnittliche Dichte von Anopheles spp.-Larven. In dieser Studie betrug die Anzahl der Larven pro Schaufel 0,61 [95 %-KI 0,41–0,81] L/Tauchgang in der LLIN + Bti-Gruppe und 3,97 [95 %-KI 3,56–4,38] L/Tauchgang in der Gruppe „Nur LLIN“ (optional). (Datei 1: Abbildung S1). Die durchschnittliche Dichte von Anopheles spp. war in der Gruppe „Nur LLIN“ 6,5-mal höher als in der Gruppe „LLIN + Bti“ (HR = 6,49; 95 %-KI 5,80–7,27; p < 0,001). Während der Behandlung wurden keine Anopheles-Mücken nachgewiesen. In der Gruppe „LLIN + Bti“ wurden ab Januar, entsprechend der zwanzigsten Bti-Behandlung, Larven gesammelt. In dieser Gruppe war ein signifikanter Rückgang der Larvendichte im frühen und späten Stadium zu verzeichnen.
Vor Beginn der Bti-Behandlung (März) wurde die mittlere Dichte von Anopheles-Mücken im frühen Larvenstadium in der LLIN + Bti-Gruppe auf 1,28 [95 %-KI 0,22–2,35] l/dive und in der LLIN + Bti-Gruppe auf 1,37 [95 %-KI 0,36–2,36] l/dive geschätzt. Die Dichte wurde nur im LLIN-Arm gemessen (Abb. 2A). Nach der Bti-Behandlung sank die mittlere Dichte der Anopheles-Mücken im frühen Larvenstadium in der LLIN + Bti-Gruppe im Allgemeinen allmählich von 0,90 [95 %-KI 0,19–1,61] auf 0,10 [95 %-KI 0,03–0,18] l/dip. Die Dichte der Anopheles-Larven im frühen Larvenstadium blieb in der LLIN + Bti-Gruppe niedrig. In der LLIN-Gruppe allein schwankte die Abundanz von Anopheles spp. Es wurden Larven im frühen Stadium mit mittleren Dichten von 0,23 [95 %-KI 0,07–0,54] L/Tauchgang bis 2,37 [95 %-KI 1,77–2,98] L/Tauchgang beobachtet. Insgesamt war die mittlere Dichte früher Anopheles-Larven in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) mit 1,90 [95 %-KI 1,70–2,10] L/Tauchgang statistisch signifikant höher als in der Gruppe mit LLIN + Bti (0,38 [95 %-KI 0,28–0,47] L/Tauchgang; relatives Risiko [RR] = 5,04; 95 %-KI 4,36–5,85; p < 0,001).
Veränderungen der durchschnittlichen Dichte von Anopheles-Larven. Moskitonetze im frühen (A) und späten Larvenstadium (B) in einer Studiengruppe von März 2019 bis Februar 2020 in der Region Napier, nördliche Elfenbeinküste. LLIN: langlebiges insektizidbehandeltes Netz; Bti: Bacillus thuringiensis, Israel; TRT: Behandlung.
Durchschnittliche Dichte von Anopheles spp.-Larven im späten Larvenstadium in der LLIN + Bti-Gruppe. Die Bti-Dichte vor der Behandlung betrug 2,98 [95 %-KI 0,26–5,60] L/dip, während die Dichte in der LLIN-Gruppe allein 1,46 [95 %-KI 0,26–2,65] l/Tag betrug. Nach der Bti-Anwendung sank die Dichte der Anopheles-Larven im späten Larvenstadium in der LLIN + Bti-Gruppe von 0,22 [95 %-KI 0,04–0,40] auf 0,03 [95 %-KI 0,00–0,06] L/dip (Abb. 2B). In der Gruppe, die ausschließlich mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) geschützt war, stieg die Dichte der späten Anopheles-Larven von 0,35 [95 %-KI -0,15–0,76] auf 2,77 [95 %-KI 1,13–4,40] l/Tauchgang an, wobei die Larvendichte je nach Probenahmedatum schwankte. Die mittlere Dichte der späten Anopheles-Larven in der LLIN-Gruppe betrug 2,07 [95 %-KI 1,84–2,29] l/Tauchgang und war damit neunmal höher als die 0,23 [95 %-KI 0,11–0,36] l/Tauchgang in der LLIN + Bti-Gruppe (RR = 8,80; 95 %-KI 7,40–10,57; p < 0,001).
Die durchschnittliche Dichte von Culex spp. betrug 0,33 [95 %-KI 0,21–0,45] L/dip in der LLIN + Bti-Gruppe und 2,67 [95 %-KI 2,23–3,10] L/dip in der LLIN-Gruppe (siehe Abbildung S2 in der Zusatzdatei 2). Die durchschnittliche Dichte von Culex spp. war in der LLIN-Gruppe signifikant höher als in der LLIN + Bti-Gruppe (HR = 8,00; 95 %-KI 6,90–9,34; p < 0,001).
Die durchschnittliche Dichte der Gattung Culex spp. betrug vor der Behandlung 1,26 [95 %-KI 0,10–2,42] l/dip in der Gruppe LLIN + Bti und 1,28 [95 %-KI 0,37–2,36] l/dip in der Gruppe LLIN allein (Abb. 3A). Nach der Bti-Behandlung sank die Dichte der frühen Culex-Larven von 0,07 [95 %-KI -0,001–0,001] auf 0,25 [95 %-KI 0,006–0,51] l/dip. Ab Dezember wurden in den mit Bti behandelten Larvenhabitaten keine Culex-Larven mehr gefunden. Die Dichte der frühen Culex-Larven sank in der LLIN+Bti-Gruppe auf 0,21 [95 %-KI 0,14–0,28] L/Tauchgang, war aber in der LLIN-Gruppe allein mit 1,30 [95 %-KI 1,10–1,50] L/Tauchgang/Tag höher. Die Dichte der frühen Culex-Larven in der LLIN-Gruppe allein war sechsmal höher als in der LLIN+Bti-Gruppe (RR = 6,17; 95 %-KI 5,11–7,52; p < 0,001).
Veränderungen der durchschnittlichen Dichte von Culex spp.-Larven. Untersuchungen im frühen Entwicklungsstadium (A) und im frühen Entwicklungsstadium (B) einer Studiengruppe von März 2019 bis Februar 2020 in der Region Napier, Nord-Elfenbeinküste. Langlebiges insektizidbehandeltes Moskitonetz (LLIN), Bti (Bacillus thuringiensis Israel), Trt-Behandlung
Vor der Bti-Behandlung betrug die mittlere Dichte von Culex-Larven im späten Larvenstadium in der LLIN+Bti-Gruppe 0,97 [95 %-KI 0,09–1,85] l/Tauchgang und in der LLIN-Gruppe 1,60 [95 %-KI 0,16–3,37] l/Tauchgang (Abb. 3B). Die mittlere Dichte von Culex-Arten im späten Larvenstadium nach Beginn der Bti-Behandlung sank in der LLIN+Bti-Gruppe allmählich und war niedriger als in der LLIN-Gruppe, deren Dichte weiterhin sehr hoch war. Die mittlere Dichte von Culex-Larven im späten Larvenstadium betrug in der LLIN+Bti-Gruppe 0,12 [95 %-KI 0,07–0,15] l/Tauchgang und in der LLIN-Gruppe 1,36 [95 %-KI 1,11–1,61] l/Tauchgang. Die mittlere Dichte der Culex-Larven im späten Larvenstadium war in der Gruppe mit ausschließlich LLIN signifikant höher als in der Gruppe mit LLIN + Bti (RR = 11,19; 95 % KI 8,83–14,43; P < 0,001).
Vor der Bti-Behandlung betrug die mittlere Puppendichte pro Marienkäfer 0,59 [95 %-KI 0,24–0,94] in der LLIN + Bti-Gruppe und 0,38 [95 %-KI 0,13–0,63] in der LLIN-Gruppe (Abb. 4). Die Gesamtpuppendichte lag bei 0,10 [95 %-KI 0,06–0,14] in der LLIN + Bti-Gruppe und bei 0,84 [95 %-KI 0,75–0,92] in der LLIN-Gruppe. Die Bti-Behandlung reduzierte die mittlere Puppendichte in der LLIN + Bti-Gruppe im Vergleich zur LLIN-Gruppe signifikant (OR = 8,30; 95 %-KI 6,37–11,02; p < 0,001). In der LLIN + Bti-Gruppe wurden nach November keine Puppen mehr gefunden.
Veränderungen der durchschnittlichen Puppendichte. Die Studie wurde von März 2019 bis Februar 2020 in der Region Napier im Norden der Elfenbeinküste durchgeführt. Langlebiges insektizidbehandeltes Moskitonetz (LLIN), Bti (Bacillus thuringiensis Israel), Trt-Behandlung
Im Untersuchungsgebiet wurden insgesamt 3456 adulte Stechmücken gesammelt. Die Stechmücken gehören 17 Arten aus 5 Gattungen an (Anopheles, Culex, Aedes, Eretmapodites) (Tabelle 1). Unter den Malariaüberträgern war An. gambiae sl mit einem Anteil von 74,9 % (n = 2587) die häufigste Art, gefolgt von An. gambiae sl. funestus (2,5 %, n = 86) und An. null (0,7 %, n = 24). Der Anteil von An. gambiae sl in der LLIN + Bti-Gruppe (10,9 %, n = 375) war geringer als in der LLIN-Gruppe allein (64 %, n = 2212). Individuen der Unterart An. gambiae sl wurden nur der LLIN-Gruppe zugeordnet. Funestus waren sowohl in der LLIN + Bti-Gruppe als auch in der LLIN-Gruppe allein vorhanden.
In Studien, die vor der Bti-Anwendung am Brutplatz (3 Monate) begannen, wurde die mittlere Anzahl nachtaktiver Stechmücken pro Person (S/P/N) in der LLIN+Bti-Gruppe auf 0,83 [95 %-KI 0,50–1,17] geschätzt, während sie in der LLIN-Gruppe (nur LLIN) 0,72 [95 %-KI 0,41–1,02] betrug (Abb. 5). In der LLIN+Bti-Gruppe ging der Schaden durch Culex-Mücken zurück und blieb trotz eines Höchstwertes von 1,95 [95 %-KI 1,35–2,54] S/P im September nach der 12. Bti-Anwendung niedrig. In der LLIN-Gruppe (nur LLIN) stieg die mittlere Stechmückenstichrate hingegen allmählich an, bevor sie im September einen Höchstwert von 11,33 [95 %-KI 7,15–15,50] S/P/N erreichte. Die Gesamthäufigkeit von Mückenstichen war in der LLIN + Bti-Gruppe im Vergleich zur LLIN-Gruppe allein zu jedem Zeitpunkt der Studie signifikant niedriger (HR = 3,66; 95% KI 3,01–4,49; P < 0,001).
Stichraten der Mückenfauna im Untersuchungsgebiet der Region Napier im Norden der Elfenbeinküste von März 2019 bis Februar 2020. LLIN: Langlebiges insektizidbehandeltes Moskitonetz, Bti: Bacillus thuringiensis Israel, Trt: Behandlung, Stiche pro Person und Nacht pro Mensch und Nacht.
Anopheles gambiae ist der häufigste Malariaüberträger im Untersuchungsgebiet. Die Stechgeschwindigkeit von Anopheles gambiae wurde zu Studienbeginn bei gambischen Frauen mit einem Verhältnis von Stichen zu Vorstichen (b/p/n) von 0,64 [95 %-KI 0,27–1,00] in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti (Bti) von 0,74 [95 %-KI 0,30–1,17] in der Gruppe mit ausschließlich LLIN (Abb. 6) gemessen. Während der Bti-Interventionsphase wurde die höchste Stechaktivität im September beobachtet, entsprechend dem zwölften Behandlungszyklus, mit einem Spitzenwert von 1,46 [95 %-KI 0,87–2,05] Stichen pro Vorstich in der Gruppe mit LLIN + Bti und einem Spitzenwert von 9,65 [95 %-KI 0,87–2,05] Stichen pro Vorstich in der Gruppe mit ausschließlich LLIN. Die Infektionsrate in Gambia war in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti (0,59 [95 %-KI 0,43–0,75] Fälle/Patienten/Neuinfektionen) signifikant niedriger als in der Gruppe mit nur imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) (2,97 [95 %-KI 2,02–3,93] Fälle/Patienten/Neuinfektionen). (RR = 3,66; 95 %-KI 3,01–4,49; p < 0,001).
Annas Beißgeschwindigkeit. gambiae sl, Forschungseinheit in der Region Napier, nördliche Elfenbeinküste, von März 2019 bis Februar 2020. LLIN: Insektizidbehandeltes, langlebiges Moskitonetz, Bti: Bacillus thuringiensis Israel, Trt-Behandlung, Stiche pro Person und Nacht.
Insgesamt 646 Ampere. Gambia ist zersplittert. Insgesamt der Prozentsatz der lokalen Sicherheit. Die Geburtenraten in Gambia lagen während des gesamten Untersuchungszeitraums im Allgemeinen über 70 %, mit Ausnahme des Julis, als nur die LLIN-Gruppe verwendet wurde (Zusatzdatei 3: Abbildung S3). Die durchschnittliche Fruchtbarkeitsrate im Untersuchungsgebiet betrug jedoch 74,5 % (n = 481). In der LLIN+Bti-Gruppe blieb die Geburtenrate mit Ausnahme des Septembers, als sie auf 77,5 % sank, auf einem hohen Niveau von über 80 %. In der reinen LLIN-Gruppe wurden jedoch Schwankungen der durchschnittlichen Fruchtbarkeitsraten beobachtet, wobei die niedrigste geschätzte durchschnittliche Fruchtbarkeitsrate 64,5 % betrug.
Eine Studie aus Gambia, die 389 Ann. veröffentlichte, ergab, dass 80,5 % (n = 313) der Blutkonserven menschlichen Ursprungs waren, 6,2 % (n = 24) der Frauen Mischblut (menschliches und tierisches Blut) konsumierten und 5,1 % (n = 20) Blut aus Tierfutter (Rinder, Schafe und Ziegen) erhielten. 8,2 % (n = 32) der analysierten Proben waren negativ auf Blutmahlzeiten. In der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti (Biolumineszenz-Insektizid) lag der Anteil der Frauen, die menschliches Blut erhielten, bei 25,7 % (n = 100), verglichen mit 54,8 % (n = 213) in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) (Zusatzdatei 5: Tabelle S5).
Insgesamt wurden 308 Ampullen untersucht. P. gambiae wurde getestet, um Mitglieder des Artenkomplexes und eine P. falciparum-Infektion zu identifizieren (Zusatzdatei 4: Tabelle S4). Zwei „verwandte Arten“ koexistieren im Untersuchungsgebiet, nämlich An. gambiae ss (95,1 %, n = 293) und An. coluzzii (4,9 %, n = 15). Der Anteil von Anopheles gambiae ss war in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti signifikant niedriger als in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen allein (66,2 %, n = 204) (RR = 2,29 [95 %-KI 1,78–2,97], p < 0,001). Ein ähnlicher Anteil an Anopheles-Mücken wurde in der LLIN + Bti-Gruppe (3,6 %, n = 11) und der LLIN-Gruppe (1,3 %, n = 4) gefunden (RR = 2,75 [95 %-KI 0,81–11,84], p = 0,118). Die Prävalenz von Plasmodium falciparum bei Anopheles SL in Gambia betrug 11,4 % (n = 35). Die Infektionsrate in Gambia war in der LLIN + Bti-Gruppe (2,9 %, n = 9) signifikant niedriger als in der LLIN-Gruppe (8,4 %, n = 26) (RR = 2,89 [95 %-KI 1,31–7,01], p = 0,006). Im Vergleich zu Anopheles-Mücken wiesen Anopheles gambiae-Mücken mit 94,3 % (n = 32) den höchsten Anteil an Plasmodium-Infektionen auf. Bei Anopheles coluzzii lag dieser Anteil hingegen nur bei 5,7 % (n = 5) (RR = 6,4 [95 %-KI 2,47–21,04], P < 0,001).
Insgesamt wurden 2.435 Personen aus 400 Haushalten befragt. Die durchschnittliche Haushaltsdichte beträgt 6,1 Personen. Der Anteil der Haushalte mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) lag bei 85 % (n = 340), verglichen mit 15 % (n = 60) in Haushalten ohne LLIN (RR = 5,67 [95 %-KI 4,29–7,59], p < 0,001) (Zusatzdatei 5: Tabelle S5). Die Nutzung von LLIN betrug 40,7 % (n = 990) in der Gruppe „LLIN + Bti“ im Vergleich zu 36,2 % (n = 882) in der Gruppe „LLIN allein“ (RR = 1,12 [95 %-KI 1,02–1,23], p = 0,013). Die durchschnittliche Gesamtnutzungsrate von Moskitonetzen im Untersuchungsgebiet lag bei 38,4 % (n = 1.842). Der Anteil der Kinder unter fünf Jahren, die das Internet nutzten, war in beiden Studiengruppen ähnlich: 41,2 % (n = 195) in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti sowie 43,2 % (n = 186) in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) (HR = 1,05 [95 %-KI 0,85–1,29], p = 0,682). Bei den 5- bis 15-Jährigen gab es keinen Unterschied in der Internetnutzung zwischen 36,3 % (n = 250) in der Gruppe mit imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) und Bti (Bti) und 36,9 % (n = 250) in der Gruppe mit ausschließlich imprägnierten Moskitonetzen (LLIN) (RR = 1,02 [95 %-KI 1,02–1,23], p = 0,894). Allerdings nutzten Personen über 15 Jahre in der Gruppe LLIN + Bti 42,7 % (n = 554) seltener Moskitonetze als in der Gruppe LLIN allein 33,4 % (n = 439) (RR = 1,26 [95 % KI 1,11–1,43], P < 0,001).
Im Gesundheitszentrum Napier wurden zwischen März 2018 und Februar 2020 insgesamt 2484 klinische Fälle erfasst. Die Prävalenz klinischer Malaria in der Allgemeinbevölkerung betrug 82,0 % aller klinisch-pathologischen Fälle (n = 2038). Die jährlichen lokalen Inzidenzraten von Malaria in diesem Untersuchungsgebiet lagen vor der Bti-Behandlung bei 479,8 ‰ und nach der Behandlung bei 297,5 ‰ (Tabelle 2).
Veröffentlichungsdatum: 01.07.2024