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Exogene Gibberellinsäure und Benzylamin modulieren das Wachstum und die Chemie von Schefflera dwarfis: eine schrittweise Regressionsanalyse

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Dekorative Blattpflanzen mit üppiger Ausstrahlung werden sehr geschätzt.Eine Möglichkeit, dies zu erreichen, ist die VerwendungPflanzenwachstumsregulatorenals Werkzeuge für das Pflanzenwachstumsmanagement.Die Studie wurde an Schefflera dwarf (einer dekorativen Blattpflanze) durchgeführt, die mit Blattsprays behandelt wurdeGibberellinsäureund Benzyladeninhormon in einem Gewächshaus, das mit einem Nebelbewässerungssystem ausgestattet ist.Das Hormon wurde in drei Stufen alle 15 Tage in Konzentrationen von 0, 100 und 200 mg/l auf die Blätter von Zwerg-Schefflera gesprüht.Das Experiment wurde auf faktorieller Basis in einem vollständig randomisierten Design mit vier Wiederholungen durchgeführt.Die Kombination von Gibberellinsäure und Benzyladenin in einer Konzentration von 200 mg/l hatte einen signifikanten Einfluss auf die Anzahl der Blätter, die Blattfläche und die Pflanzenhöhe.Diese Behandlung führte auch zu dem höchsten Gehalt an photosynthetischen Pigmenten.Darüber hinaus wurden die höchsten Verhältnisse an löslichen Kohlenhydraten und reduzierenden Zuckern bei Benzyladenin bei 100 und 200 mg/L und bei Gibberellinsäure + Benzyladenin bei 200 mg/L beobachtet.Die schrittweise Regressionsanalyse zeigte, dass das Wurzelvolumen die erste Variable war, die in das Modell einging, und 44 % der Variation erklärte.Die nächste Variable war die Masse der frischen Wurzeln, wobei das bivariate Modell 63 % der Variation in der Blattzahl erklärte.Den größten positiven Effekt auf die Blattzahl hatte das Frischwurzelgewicht (0,43), das positiv mit der Blattzahl (0,47) korrelierte.Die Ergebnisse zeigten, dass Gibberellinsäure und Benzyladenin in einer Konzentration von 200 mg/l das morphologische Wachstum, die Chlorophyll- und Carotinoidsynthese von Liriodendron tulipifera deutlich verbesserten und den Gehalt an Zuckern und löslichen Kohlenhydraten reduzierten.
Schefflera arborescens (Hayata) Merr ist eine immergrüne Zierpflanze aus der Familie der Araliaceae, die in China und Taiwan beheimatet ist1.Diese Pflanze wird oft als Zimmerpflanze angebaut, aber unter solchen Bedingungen kann nur eine Pflanze wachsen.Die Blätter haben 5 bis 16 Blättchen mit einer Länge von jeweils 10 bis 20 cm2.Zwerg-Schefflera wird jedes Jahr in großen Mengen verkauft, moderne Gartenbaumethoden werden jedoch selten angewendet.Daher erfordert der Einsatz von Pflanzenwachstumsregulatoren als wirksame Managementinstrumente zur Verbesserung des Wachstums und der nachhaltigen Produktion von Gartenbauprodukten mehr Aufmerksamkeit.Heutzutage hat der Einsatz von Pflanzenwachstumsregulatoren erheblich zugenommen3,4,5.Gibberellinsäure ist ein Pflanzenwachstumsregulator, der den Pflanzenertrag steigern kann6.Eine seiner bekannten Wirkungen ist die Stimulierung des vegetativen Wachstums, einschließlich der Stängel- und Wurzelverlängerung und der Vergrößerung der Blattfläche7.Der bedeutendste Effekt von Gibberellinen ist eine Erhöhung der Stängelhöhe aufgrund der Verlängerung der Internodien.Das Besprühen der Blätter mit Gibberellinen bei Zwergpflanzen, die keine Gibberelline produzieren können, führt zu einer erhöhten Stängelverlängerung und Pflanzenhöhe8.Das Besprühen von Blüten und Blättern mit Gibberellinsäure in einer Konzentration von 500 mg/l kann die Pflanzenhöhe, Anzahl, Breite und Länge der Blätter erhöhen9.Es wurde berichtet, dass Gibberelline das Wachstum verschiedener Laubpflanzen stimulieren10.Bei Waldkiefer (Pinussylvestris) und Weißfichte (Piceaglauca) wurde eine Stängelverlängerung beobachtet, wenn die Blätter mit Gibberellinsäure besprüht wurden11.
Eine Studie untersuchte die Auswirkungen von drei Cytokinin-Pflanzenwachstumsregulatoren auf die Bildung von Seitenzweigen bei Lily officinalis.Im Herbst und Frühling wurden Biegeexperimente durchgeführt, um saisonale Effekte zu untersuchen.Die Ergebnisse zeigten, dass Kinetin, Benzyladenin und 2-Prenyladenin keinen Einfluss auf die Bildung zusätzlicher Verzweigungen hatten.Allerdings führten 500 ppm Benzyladenin in den Herbst- und Frühjahrsexperimenten zur Bildung von 12,2 bzw. 8,2 Nebenzweigen, verglichen mit 4,9 bzw. 3,9 Zweigen in den Kontrollpflanzen.Studien haben gezeigt, dass Sommerbehandlungen wirksamer sind als Winterbehandlungen12.In einem anderen Experiment wurde Peace Lily var.Tassone-Pflanzen wurden mit 0, 250 und 500 ppm Benzyladenin in Töpfen mit 10 cm Durchmesser behandelt.Die Ergebnisse zeigten, dass die Bodenbehandlung die Anzahl zusätzlicher Blätter im Vergleich zu Kontrollpflanzen und mit Benzyladenin behandelten Pflanzen deutlich erhöhte.Vier Wochen nach der Behandlung wurden neue zusätzliche Blätter beobachtet und die maximale Blattproduktion wurde acht Wochen nach der Behandlung beobachtet.20 Wochen nach der Behandlung verzeichneten bodenbehandelte Pflanzen einen geringeren Höhenzuwachs als vorbehandelte Pflanzen13.Es wurde berichtet, dass Benzyladenin in einer Konzentration von 20 mg/L die Pflanzenhöhe und Blattzahl in Croton 14 deutlich erhöhen kann. Bei Calla-Lilien führte Benzyladenin in einer Konzentration von 500 ppm zu einer Erhöhung der Anzahl der Zweige, während die Anzahl Die Zahl der Filialen war in der Kontrollgruppe am geringsten15.Ziel dieser Studie war es, das Besprühen der Blätter mit Gibberellinsäure und Benzyladenin zu untersuchen, um das Wachstum der Zierpflanze Schefflera dwarfa zu verbessern.Diese Pflanzenwachstumsregulatoren können kommerziellen Züchtern dabei helfen, das ganze Jahr über eine angemessene Produktion zu planen.Es wurden keine Studien zur Verbesserung des Wachstums von Liriodendron tulipifera durchgeführt.
Diese Studie wurde im Gewächshaus für Zimmerpflanzenforschung der Islamischen Azad-Universität in Jiloft, Iran, durchgeführt.Es wurden gleichmäßige Wurzeltransplantate von Zwerg-Schefflera mit einer Höhe von 25 ± 5 cm vorbereitet (sechs Monate vor dem Experiment vermehrt) und in Töpfe ausgesät.Der Topf ist aus Kunststoff, schwarz, mit einem Durchmesser von 20 cm und einer Höhe von 30 cm16.
Das Kulturmedium in dieser Studie war eine Mischung aus Torf, Humus, gewaschenem Sand und Reishülsen im Verhältnis 1:1:1:1 (nach Volumen)16.Legen Sie zur Drainage eine Schicht Kieselsteine ​​auf den Boden des Topfes.Die durchschnittlichen Tages- und Nachttemperaturen im Gewächshaus betrugen im Spätfrühling und Sommer 32 ± 2 °C bzw. 28 ± 2 °C.Die relative Luftfeuchtigkeit liegt bei >70 %.Verwenden Sie zur Bewässerung ein Sprühsystem.Im Durchschnitt werden Pflanzen 12 Mal am Tag gegossen.Im Herbst und Sommer beträgt die Bewässerungszeit jeweils 8 Minuten, das Bewässerungsintervall 1 Stunde.Pflanzen wurden auf ähnliche Weise viermal, 2, 4, 6 und 8 Wochen nach der Aussaat, mit einer Mikronährstofflösung (Ghoncheh Co., Iran) in einer Konzentration von 3 ppm angebaut und jedes Mal mit 100 ml Lösung bewässert.Die Nährlösung enthält 8 ppm N, 4 ppm P, 5 ppm K und die Spurenelemente Fe, Pb, Zn, Mn, Mo und B.
Drei Konzentrationen von Gibberellinsäure und dem Pflanzenwachstumsregulator Benzyladenin (gekauft von Sigma) wurden mit 0, 100 und 200 mg/L zubereitet und in drei Schritten im Abstand von 15 Tagen auf Pflanzenknospen gesprüht17.Tween 20 (0,1 %) (gekauft von Sigma) wurde in der Lösung verwendet, um deren Langlebigkeit und Absorptionsrate zu erhöhen.Sprühen Sie die Hormone frühmorgens mit einem Sprühgerät auf die Knospen und Blätter von Liriodendron tulipifera.Pflanzen werden mit destilliertem Wasser besprüht.
Pflanzenhöhe, Stängeldurchmesser, Blattfläche, Chlorophyllgehalt, Anzahl der Internodien, Länge der Nebenzweige, Anzahl der Nebenzweige, Wurzelvolumen, Wurzellänge, Masse von Blatt, Wurzel, Stängel und trockener Frischmasse, Gehalt an photosynthetischen Pigmenten (Chlorophyll). a, Chlorophyll b) Gesamtchlorophyll, Carotinoide, Gesamtpigmente), reduzierende Zucker und lösliche Kohlenhydrate wurden in verschiedenen Behandlungen gemessen.
Der Chlorophyllgehalt junger Blätter wurde 180 Tage nach dem Besprühen mit einem Chlorophyllmessgerät (Spad CL-01) von 9:30 bis 10 Uhr (aufgrund der Blattfrische) gemessen.Zusätzlich wurde die Blattfläche 180 Tage nach dem Sprühen gemessen.Wiegen Sie drei Blätter von der Ober-, Mittel- und Unterseite des Stiels jedes Topfes ab.Diese Blätter werden dann als Vorlagen auf A4-Papier verwendet und das resultierende Muster ausgeschnitten.Außerdem wurden das Gewicht und die Oberfläche eines Blattes A4-Papier gemessen.Anschließend wird anhand der Proportionen die Fläche der schablonierten Blätter berechnet.Zusätzlich wurde das Wurzelvolumen mit einem Messzylinder bestimmt.Das Blatttrockengewicht, das Stängeltrockengewicht, das Wurzeltrockengewicht und das Gesamttrockengewicht jeder Probe wurden durch 48-stündiges Trocknen im Ofen bei 72 °C gemessen.
Der Gehalt an Chlorophyll und Carotinoiden wurde nach der Lichtenthaler-Methode18 gemessen.Dazu wurden 0,1 g frische Blätter in einem Porzellanmörser mit 15 ml 80 %igem Aceton zermahlen und nach dem Filtrieren ihre optische Dichte mit einem Spektrophotometer bei Wellenlängen von 663,2, 646,8 und 470 nm gemessen.Kalibrieren Sie das Gerät mit 80 % Aceton.Berechnen Sie die Konzentration photosynthetischer Pigmente mithilfe der folgenden Gleichung:
Unter ihnen stehen Chl a, Chl b, Chl T und Car für Chlorophyll a, Chlorophyll b, Gesamtchlorophyll bzw. Carotinoide.Die Ergebnisse werden in mg/ml Pflanze angegeben.
Reduzierende Zucker wurden mit der Somogy-Methode19 gemessen.Dazu werden 0,02 g Pflanzensprossen in einem Porzellanmörser mit 10 ml destilliertem Wasser zermahlen und in ein kleines Glas gegossen.Erhitzen Sie das Glas zum Kochen und filtern Sie dann den Inhalt mit Whatman-Filterpapier Nr. 1, um einen Pflanzenextrakt zu erhalten.Übertragen Sie 2 ml jedes Extrakts in ein Reagenzglas und geben Sie 2 ml Kupfersulfatlösung hinzu.Decken Sie das Reagenzglas mit Watte ab und erhitzen Sie es 20 Minuten lang in einem Wasserbad bei 100 °C.In diesem Stadium wird Cu2+ durch Reduktion des Aldehydmonosaccharids in Cu2O umgewandelt und am Boden des Reagenzglases ist eine Lachsfarbe (Terrakotta) sichtbar.Nachdem das Reagenzglas abgekühlt ist, fügen Sie 2 ml Phosphomolybdänsäure hinzu und es erscheint eine blaue Farbe.Schütteln Sie die Tube kräftig, bis sich die Farbe gleichmäßig in der Tube verteilt.Lesen Sie die Absorption der Lösung bei 600 nm mit einem Spektrophotometer ab.
Berechnen Sie die Konzentration reduzierender Zucker anhand der Standardkurve.Die Konzentration löslicher Kohlenhydrate wurde nach der Fales-Methode20 bestimmt.Dazu wurden 0,1 g Sprossen mit 2,5 ml 80 %igem Ethanol bei 90 °C 60 Minuten lang (zwei Stufen zu je 30 Minuten) gemischt, um lösliche Kohlenhydrate zu extrahieren.Anschließend wird der Extrakt filtriert und der Alkohol verdampft.Der resultierende Niederschlag wird in 2,5 ml destilliertem Wasser gelöst.Gießen Sie 200 ml jeder Probe in ein Reagenzglas und geben Sie 5 ml Anthron-Indikator hinzu.Die Mischung wurde 17 Minuten lang in ein Wasserbad bei 90 °C gestellt und nach dem Abkühlen wurde ihre Absorption bei 625 nm bestimmt.
Das Experiment war ein faktorielles Experiment, das auf einem vollständig randomisierten Design mit vier Wiederholungen basierte.Das PROC UNIVARIATE-Verfahren wird verwendet, um die Normalität von Datenverteilungen vor der Varianzanalyse zu untersuchen.Die statistische Analyse begann mit einer deskriptiven statistischen Analyse, um die Qualität der gesammelten Rohdaten zu verstehen.Berechnungen sollen große Datensätze vereinfachen und komprimieren, um sie leichter interpretierbar zu machen.Anschließend wurden komplexere Analysen durchgeführt.Duncans Test wurde mit der SPSS-Software (Version 24; IBM Corporation, Armonk, NY, USA) durchgeführt, um mittlere Quadrate und experimentelle Fehler zu berechnen und so Unterschiede zwischen Datensätzen zu ermitteln.Der Duncan-Mehrfachtest (DMRT) wurde verwendet, um Unterschiede zwischen den Mittelwerten auf einem Signifikanzniveau von (0,05 ≤ p) zu identifizieren.Der Pearson-Korrelationskoeffizient (r) wurde mit der SPSS-Software (Version 26; IBM Corp., Armonk, NY, USA) berechnet, um die Korrelation zwischen verschiedenen Parameterpaaren zu bewerten.Darüber hinaus wurde eine lineare Regressionsanalyse mit der SPSS-Software (v.26) durchgeführt, um die Werte der Variablen des ersten Jahres basierend auf den Werten der Variablen des zweiten Jahres vorherzusagen.Andererseits wurde eine schrittweise Regressionsanalyse mit p < 0,01 durchgeführt, um die Merkmale zu identifizieren, die einen entscheidenden Einfluss auf die Blätter von Zwerg-Schefflera haben.Es wurde eine Pfadanalyse durchgeführt, um die direkten und indirekten Auswirkungen jedes Attributs im Modell zu bestimmen (basierend auf den Merkmalen, die die Variation besser erklären).Alle oben genannten Berechnungen (Normalität der Datenverteilung, einfacher Korrelationskoeffizient, schrittweise Regression und Pfadanalyse) wurden mit der Software SPSS V.26 durchgeführt.
Die ausgewählten Kulturpflanzenproben entsprachen den relevanten institutionellen, nationalen und internationalen Richtlinien sowie der innerstaatlichen Gesetzgebung des Iran.
Tabelle 1 zeigt deskriptive Statistiken zu Mittelwert, Standardabweichung, Minimum, Maximum, Bereich und phänotypischem Variationskoeffizienten (CV) für verschiedene Merkmale.Unter diesen Statistiken ermöglicht CV den Vergleich von Attributen, da es dimensionslos ist.Reduzierende Zucker (40,39 %), Wurzeltrockengewicht (37,32 %), Wurzelfrischgewicht (37,30 %), Zucker-Zucker-Verhältnis (30,20 %) und Wurzelvolumen (30 %) sind am höchsten.und Chlorophyllgehalt (9,88 %).) und Blattfläche haben den höchsten Index (11,77 %) und den niedrigsten CV-Wert.Tabelle 1 zeigt, dass das Gesamtfeuchtgewicht die größte Bandbreite aufweist.Dieses Merkmal hat jedoch nicht den höchsten CV.Daher sollten dimensionslose Metriken wie CV zum Vergleich von Attributänderungen verwendet werden.Ein hoher CV weist auf einen großen Unterschied zwischen den Behandlungen für dieses Merkmal hin.Die Ergebnisse dieses Experiments zeigten große Unterschiede zwischen Behandlungen mit niedrigem Zuckergehalt in Bezug auf das Trockengewicht der Wurzeln, das Gewicht frischer Wurzeln, das Verhältnis von Kohlenhydraten zu Zucker und die Eigenschaften des Wurzelvolumens.
Die ANOVA-Ergebnisse zeigten, dass das Besprühen der Blätter mit Gibberellinsäure und Benzyladenin im Vergleich zur Kontrolle einen signifikanten Einfluss auf die Pflanzenhöhe, die Anzahl der Blätter, die Blattfläche, das Wurzelvolumen, die Wurzellänge, den Chlorophyllindex, das Frischgewicht und das Trockengewicht hatte.
Der Vergleich der Mittelwerte zeigte, dass Pflanzenwachstumsregulatoren einen signifikanten Einfluss auf die Pflanzenhöhe und die Blattzahl hatten.Die wirksamsten Behandlungen waren Gibberellinsäure in einer Konzentration von 200 mg/l und Gibberellinsäure + Benzyladenin in einer Konzentration von 200 mg/l.Im Vergleich zur Kontrolle nahmen die Pflanzenhöhe und die Anzahl der Blätter um das 32,92-fache bzw. 62,76-fache zu (Tabelle 2).
Die Blattfläche nahm bei allen Varianten im Vergleich zur Kontrolle signifikant zu, wobei der maximale Anstieg bei 200 mg/l für Gibberellinsäure beobachtet wurde und 89,19 cm2 erreichte.Die Ergebnisse zeigten, dass die Blattfläche mit zunehmender Wachstumsregulatorkonzentration signifikant zunahm (Tabelle 2).
Alle Behandlungen erhöhten das Wurzelvolumen und die Wurzellänge im Vergleich zur Kontrolle deutlich.Die Kombination aus Gibberellinsäure + Benzyladenin hatte den größten Effekt und erhöhte das Volumen und die Länge der Wurzel im Vergleich zur Kontrolle um die Hälfte (Tabelle 2).
Die höchsten Werte des Stammdurchmessers und der Internodienlänge wurden bei der Kontrollbehandlung bzw. bei der Behandlung mit Gibberellinsäure + Benzyladenin 200 mg/l beobachtet.
Der Chlorophyllindex stieg in allen Varianten im Vergleich zur Kontrolle.Der höchste Wert dieses Merkmals wurde bei der Behandlung mit Gibberellinsäure + Benzyladenin 200 mg/l beobachtet, was 30,21 % höher war als bei der Kontrolle (Tabelle 2).
Die Ergebnisse zeigten, dass die Behandlung zu signifikanten Unterschieden im Pigmentgehalt sowie einer Reduzierung von Zucker und löslichen Kohlenhydraten führte.
Die Behandlung mit Gibberellinsäure + Benzyladenin führte zu einem maximalen Gehalt an photosynthetischen Pigmenten.Dieses Vorzeichen war in allen Varianten deutlich höher als in der Kontrolle.
Die Ergebnisse zeigten, dass alle Behandlungen den Chlorophyllgehalt von Schefflera dwarf erhöhen konnten.Der höchste Wert dieses Merkmals wurde jedoch bei der Behandlung mit Gibberellinsäure + Benzyladenin beobachtet, der um 36,95 % höher war als bei der Kontrolle (Tabelle 3).
Die Ergebnisse für Chlorophyll b waren den Ergebnissen für Chlorophyll a völlig ähnlich, der einzige Unterschied bestand in der Erhöhung des Gehalts an Chlorophyll b, der um 67,15 % höher war als in der Kontrolle (Tabelle 3).
Die Behandlung führte zu einem signifikanten Anstieg des Gesamtchlorophylls im Vergleich zur Kontrolle.Die Behandlung mit Gibberellinsäure 200 mg/l + Benzyladenin 100 mg/l führte zum höchsten Wert dieses Merkmals, der 50 % höher war als bei der Kontrolle (Tabelle 3).Den Ergebnissen zufolge führten die Kontrolle und die Behandlung mit Benzyladenin in einer Dosis von 100 mg/l zu den höchsten Raten dieses Merkmals.Liriodendron tulipifera hat den höchsten Wert an Carotinoiden (Tabelle 3).
Die Ergebnisse zeigten, dass bei Behandlung mit Gibberellinsäure in einer Konzentration von 200 mg/L der Gehalt an Chlorophyll a deutlich zu Chlorophyll b anstieg (Abb. 1).
Wirkung von Gibberellinsäure und Benzyladenin auf a/b Ch.Proportionen der Zwergschefflera.(GA3: Gibberellinsäure und BA: Benzyladenin).Die gleichen Buchstaben in jeder Abbildung zeigen an, dass der Unterschied nicht signifikant ist (P < 0,01).
Die Wirkung jeder Behandlung auf das Frisch- und Trockengewicht des Zwerg-Schefflera-Holzes war deutlich höher als die der Kontrolle.Gibberellinsäure + Benzyladenin bei 200 mg/L war die wirksamste Behandlung und erhöhte das Frischgewicht um 138,45 % im Vergleich zur Kontrolle.Im Vergleich zur Kontrolle führten alle Behandlungen mit Ausnahme von 100 mg/L Benzyladenin zu einem signifikanten Anstieg des Pflanzentrockengewichts, und 200 mg/L Gibberellinsäure + Benzyladenin führten zum höchsten Wert für dieses Merkmal (Tabelle 4).
Die meisten Varianten unterschieden sich in dieser Hinsicht deutlich von der Kontrolle, wobei die höchsten Werte bei 100 und 200 mg/l Benzyladenin und 200 mg/l Gibberellinsäure + Benzyladenin lagen (Abb. 2).
Der Einfluss von Gibberellinsäure und Benzyladenin auf das Verhältnis von löslichen Kohlenhydraten und reduzierenden Zuckern bei Zwerg-Schefflera.(GA3: Gibberellinsäure und BA: Benzyladenin).Die gleichen Buchstaben in jeder Abbildung weisen auf keinen signifikanten Unterschied hin (P < 0,01).
Um die tatsächlichen Attribute zu bestimmen und die Beziehung zwischen unabhängigen Variablen und der Blattzahl bei Liriodendron tulipifera besser zu verstehen, wurde eine schrittweise Regressionsanalyse durchgeführt.Das Wurzelvolumen war die erste Variable, die in das Modell eingegeben wurde und 44 % der Variation erklärte.Die nächste Variable war das Gewicht der frischen Wurzeln, und diese beiden Variablen erklärten 63 % der Variation in der Blattzahl (Tabelle 5).
Um die schrittweise Regression besser interpretieren zu können, wurde eine Pfadanalyse durchgeführt (Tabelle 6 und Abbildung 3).Der größte positive Effekt auf die Blattzahl war mit der Frischwurzelmasse (0,43) verbunden, die positiv mit der Blattzahl (0,47) korrelierte.Dies weist darauf hin, dass sich dieses Merkmal direkt auf den Ertrag auswirkt, während sein indirekter Einfluss durch andere Merkmale vernachlässigbar ist, und dass dieses Merkmal als Auswahlkriterium in Zuchtprogrammen für Zwergschefflera verwendet werden kann.Der direkte Effekt des Wurzelvolumens war negativ (–0,67).Der Einfluss dieses Merkmals auf die Blattzahl ist direkt, der indirekte Einfluss ist unbedeutend.Dies bedeutet, dass die Anzahl der Blätter umso geringer ist, je größer das Wurzelvolumen ist.
Abbildung 4 zeigt die Veränderungen in der linearen Regression des Wurzelvolumens und der reduzierenden Zucker.Gemäß dem Regressionskoeffizienten bedeutet jede Änderung der Wurzellänge und der löslichen Kohlenhydrate um eine Einheit, dass sich das Wurzelvolumen und der reduzierende Zucker um 0,6019 und 0,311 Einheiten ändern.
Der Pearson-Korrelationskoeffizient der Wachstumsmerkmale ist in Abbildung 5 dargestellt. Die Ergebnisse zeigten, dass die Anzahl der Blätter und die Pflanzenhöhe (0,379*) die höchste positive Korrelation und Signifikanz aufwiesen.
Wärmekarte der Beziehungen zwischen Variablen in Korrelationskoeffizienten der Wachstumsrate.# Y-Achse: 1-Index Ch., 2-Internodium, 3-LAI, 4-N der Blätter, 5-Höhe der Beine, 6-Stammdurchmesser.# Entlang der X-Achse: A – Index H., B – Abstand zwischen Knoten, C – LAY, D – N. des Blattes, E – Höhe des Hosenbeins, F – Durchmesser des Stiels.
Der Pearson-Korrelationskoeffizient für Attribute im Zusammenhang mit dem Nassgewicht ist in Abbildung 6 dargestellt. Die Ergebnisse zeigen die Beziehung zwischen Blattfeuchtgewicht und oberirdischem Trockengewicht (0,834**), Gesamttrockengewicht (0,913**) und Wurzeltrockengewicht (0,562*). )..Die Gesamttrockenmasse weist die höchste und signifikanteste positive Korrelation mit der Trockenmasse der Triebe (0,790**) und der Trockenmasse der Wurzeln (0,741**) auf.
Wärmekarte der Beziehungen zwischen Variablen des Frischgewichtskorrelationskoeffizienten.# Y-Achse: 1 – Gewicht frischer Blätter, 2 – Gewicht frischer Knospen, 3 – Gewicht frischer Wurzeln, 4 – Gesamtgewicht frischer Blätter.# Die X-Achse stellt dar: A – Frischblattgewicht, B – Frischknospengewicht, CW – Frischwurzelgewicht, D – Gesamtfrischgewicht.
Die Pearson-Korrelationskoeffizienten für trockengewichtsbezogene Attribute sind in Abbildung 7 dargestellt. Die Ergebnisse zeigen, dass Blatttrockengewicht, Knospentrockengewicht (0,848**) und Gesamttrockengewicht (0,947**), Knospentrockengewicht (0,854**) und Gesamttrockenmasse (0,781**) weisen die höchsten Werte auf.positive Korrelation und signifikante Korrelation.
Wärmekarte der Beziehungen zwischen Variablen des Trockengewicht-Korrelationskoeffizienten.# Y-Achse stellt dar: 1-Blatt-Trockengewicht, 2-Knospen-Trockengewicht, 3-Wurzel-Trockengewicht, 4-Gesamttrockengewicht.# X-Achse: A-Blatt-Trockengewicht, B-Knospen-Trockengewicht, CW-Wurzel-Trockengewicht, D-Gesamttrockengewicht.
Der Pearson-Korrelationskoeffizient der Pigmenteigenschaften ist in Abbildung 8 dargestellt. Die Ergebnisse zeigen, dass Chlorophyll a und Chlorophyll b (0,716**), Gesamtchlorophyll (0,968**) und Gesamtpigmente (0,954**);Chlorophyll b und Gesamtchlorophyll (0,868**) und Gesamtpigmente (0,851**);Das Gesamtchlorophyll weist die höchste positive und signifikante Korrelation mit den Gesamtpigmenten auf (0,984**).
Wärmekarte der Beziehungen zwischen Variablen des Chlorophyll-Korrelationskoeffizienten.# Y-Achsen: 1-Kanal a, 2-Kanal.b,3 – a/b-Verhältnis, 4 Kanäle.Insgesamt 5-Carotinoide, 6-ergiebige Pigmente.# X-Achsen: A-Ch.aB-Ch.b,C- a/b-Verhältnis, D-Ch.Gesamtgehalt, E-Carotinoide, F-Ausbeute an Pigmenten.
Die Zwerg-Schefflera ist auf der ganzen Welt eine beliebte Zimmerpflanze, deren Wachstum und Entwicklung derzeit große Aufmerksamkeit erfährt.Der Einsatz von Pflanzenwachstumsregulatoren führte zu signifikanten Unterschieden, wobei alle Behandlungen die Pflanzenhöhe im Vergleich zur Kontrolle erhöhten.Obwohl die Pflanzenhöhe normalerweise genetisch gesteuert wird, zeigen Untersuchungen, dass die Anwendung von Pflanzenwachstumsregulatoren die Pflanzenhöhe erhöhen oder verringern kann.Die Pflanzenhöhe und die Anzahl der Blätter, die mit Gibberellinsäure + Benzyladenin 200 mg/L behandelt wurden, waren mit 109 cm bzw. 38,25 am höchsten.In Übereinstimmung mit früheren Studien (SalehiSardoei et al.52) und Spathiphyllum23 wurden ähnliche Zunahmen der Pflanzenhöhe aufgrund der Behandlung mit Gibberellinsäure bei Ringelblumen, Albus alba21, Taglilien22, Taglilien, Adlerholz und Friedenslilien beobachtet.
Gibberellinsäure (GA) spielt eine wichtige Rolle in verschiedenen physiologischen Prozessen von Pflanzen.Sie stimulieren die Zellteilung, Zellverlängerung, Stammverlängerung und Größenzunahme24.GA induziert die Zellteilung und -verlängerung in Sprossspitzen und Meristemen25.Zu den Blattveränderungen gehören auch eine verringerte Stängeldicke, eine kleinere Blattgröße und eine hellere grüne Farbe26.Studien mit hemmenden oder stimulierenden Faktoren haben gezeigt, dass Kalziumionen aus internen Quellen als sekundäre Botenstoffe im Gibberellin-Signalweg in der Sorghumkrone fungieren27.HA erhöht die Pflanzenlänge, indem es die Synthese von Enzymen stimuliert, die eine Entspannung der Zellwand bewirken, wie z. B. XET oder XTH, Expansine und PME28.Dadurch vergrößern sich die Zellen, da sich die Zellwand entspannt und Wasser in die Zelle eindringt29.Die Anwendung von GA7, GA3 und GA4 kann die Stielverlängerung erhöhen30,31.Gibberellinsäure führt bei Zwergpflanzen zu einer Stängelverlängerung und bei Rosettenpflanzen verzögert sie das Blattwachstum und die Internodienverlängerung32.Vor dem Fortpflanzungsstadium vergrößert sich die Stängellänge jedoch auf das 4- bis 5-fache ihrer ursprünglichen Höhe33.Der Prozess der GA-Biosynthese in Pflanzen ist in Abbildung 9 zusammengefasst.
GA-Biosynthese in Pflanzen und Spiegel endogener bioaktiver GA, schematische Darstellung von Pflanzen (rechts) und GA-Biosynthese (links).Die Pfeile sind farblich gekennzeichnet, um der Form von HA zu entsprechen, die entlang des Biosynthesewegs angezeigt wird.Rote Pfeile zeigen verringerte GC-Werte aufgrund der Lokalisierung in Pflanzenorganen an, schwarze Pfeile weisen auf erhöhte GC-Werte hin.Bei vielen Pflanzen wie Reis und Wassermelone ist der GA-Gehalt an der Basis oder im unteren Teil des Blattes höher30.Darüber hinaus deuten einige Berichte darauf hin, dass der bioaktive GA-Gehalt abnimmt, wenn sich die Blätter von der Basis aus verlängern34.Die genauen Gibberellinspiegel in diesen Fällen sind nicht bekannt.
Auch Pflanzenwachstumsregulatoren beeinflussen maßgeblich die Anzahl und Fläche der Blätter.Die Ergebnisse zeigten, dass eine Erhöhung der Konzentration des Pflanzenwachstumsregulators zu einer deutlichen Vergrößerung der Blattfläche und -zahl führte.Es wurde berichtet, dass Benzyladenin die Produktion von Calla-Blättern steigert15.Den Ergebnissen dieser Studie zufolge verbesserten alle Behandlungen die Blattfläche und -zahl.Gibberellinsäure + Benzyladenin war die wirksamste Behandlung und führte zu der größten Anzahl und Fläche der Blätter.Beim Anbau von Zwerg-Schefflera im Innenbereich kann es zu einem merklichen Anstieg der Blattzahl kommen.
Die GA3-Behandlung erhöhte die Internodienlänge im Vergleich zu Benzyladenin (BA) oder keiner Hormonbehandlung.Dieses Ergebnis ist angesichts der Rolle von GA bei der Wachstumsförderung logisch7.Auch das Stammwachstum zeigte ähnliche Ergebnisse.Gibberellinsäure verlängerte die Länge des Stiels, verringerte jedoch seinen Durchmesser.Allerdings erhöhte die kombinierte Anwendung von BA und GA3 die Stammlänge deutlich.Dieser Anstieg war höher im Vergleich zu Pflanzen, die mit BA oder ohne das Hormon behandelt wurden.Obwohl Gibberellinsäure und Cytokinine (CK) im Allgemeinen das Pflanzenwachstum fördern, haben sie in einigen Fällen gegensätzliche Auswirkungen auf verschiedene Prozesse35.Beispielsweise wurde eine negative Wechselwirkung bei der Zunahme der Hypokotyllänge bei mit GA und BA36 behandelten Pflanzen beobachtet.Andererseits erhöhte BA das Wurzelvolumen deutlich (Tabelle 1).Bei vielen Pflanzen (z. B. Dendrobium- und Orchideenarten) wurde über ein erhöhtes Wurzelvolumen aufgrund exogener BA berichtet37,38.
Alle hormonellen Behandlungen erhöhten die Anzahl neuer Blätter.Eine natürliche Vergrößerung der Blattfläche und der Stängellänge durch Kombinationsbehandlungen ist kommerziell wünschenswert.Die Anzahl neuer Blätter ist ein wichtiger Indikator für das vegetative Wachstum.Bei der kommerziellen Produktion von Liriodendron tulipifera wurden keine exogenen Hormone eingesetzt.Allerdings könnten die wachstumsfördernden Wirkungen von GA und CK, wenn sie im Gleichgewicht angewendet werden, neue Erkenntnisse zur Verbesserung des Anbaus dieser Pflanze liefern.Bemerkenswerterweise war der synergistische Effekt der Behandlung mit BA + GA3 höher als der der allein verabreichten GA oder BA.Gibberellinsäure erhöht die Anzahl neuer Blätter.Wenn sich neue Blätter entwickeln, kann eine Erhöhung der Anzahl neuer Blätter das Blattwachstum einschränken39.Es wurde berichtet, dass GA den Transport von Saccharose von den Senken zu den Quellorganen verbessert40,41.Darüber hinaus kann die exogene Anwendung von GA auf mehrjährige Pflanzen das Wachstum vegetativer Organe wie Blätter und Wurzeln fördern und so den Übergang vom vegetativen zum reproduktiven Wachstum verhindern42.
Die Wirkung von GA auf die Erhöhung der Pflanzentrockenmasse kann durch eine Steigerung der Photosynthese aufgrund einer Vergrößerung der Blattfläche erklärt werden43.Es wurde berichtet, dass GA eine Vergrößerung der Blattfläche von Mais verursacht34.Die Ergebnisse zeigten, dass eine Erhöhung der BA-Konzentration auf 200 mg/L die Länge und Anzahl der Sekundärzweige und das Wurzelvolumen erhöhen könnte.Gibberellinsäure beeinflusst zelluläre Prozesse wie die Stimulierung der Zellteilung und -verlängerung und verbessert dadurch das vegetative Wachstum43.Darüber hinaus dehnt HA die Zellwand aus, indem es Stärke zu Zucker hydrolysiert, wodurch das Wasserpotential der Zelle verringert wird, was dazu führt, dass Wasser in die Zelle eindringt und letztendlich zu einer Zellverlängerung führt44.

 


Zeitpunkt der Veröffentlichung: 11. Juni 2024